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更新時間：2025-09-29 
瀏覽次數：2790電泳緩沖液（pH8.6）如何正確使用
上海信帆生物供應電泳緩沖液，可用于電泳實驗，醋酸纖維素薄膜實驗等，操作方便，質量穩定！
本公司用于的電泳緩沖液，離子強度為0.075.操作時候請注意上樣緩沖液：所有泳道應使用相同的上樣緩沖液，以防止因離子強度不同造成條帶遷移率偏差。
醋酸纖維素薄膜電泳實驗操作注意事項：
1.首先,裁剪適量尺寸濾紙條來搭建濾紙橋,再將緩沖液倒入電泳槽,在醋酸纖維素薄膜無光澤面做好點樣標記。
2.然后,將該面在下浸入緩沖液約二十分鐘,在浸透*以后,取出吸取多余緩沖液的備用。
3.然后,用加樣器取適量蛋白樣品均勻加于點樣線處,最終形成一定寬度、粗細均勻的直線。
4.然后,將點樣端位于負極,無光澤面朝下,平整放于濾紙橋上,平衡完畢后,調節電壓并開始電泳。
其他注意事項：
1、醋酸纖維素薄膜的預處理
市售醋酸纖維素薄膜均為干膜片，薄膜的浸潤與選膜是電泳成敗的重要關鍵之一。將干膜片漂浮于電極緩沖液表面，其目的是選擇膜片厚薄及均勻度，如漂浮15s—30s時，膜片吸水不均勻，則有白斑點或條紋，這提示膜片厚薄不勻，應舍去不用，以免造成電泳后區帶扭曲，界線不清，背景脫色困難，結果難以重復。由于醋酸纖維薄膜親水性比紙小，浸泡30min以上是保證膜片上有一定量的緩沖液，并使其恢復到原來多孔的網狀結構。最好是讓漂浮于緩沖液的薄膜吸滿緩沖液后自然下沉，這樣可將膜片上聚集的小氣泡趕著走。點樣時，應將膜片表面多余的緩沖液用濾紙吸去，以免緩沖液太多引起樣品擴散。但也不能吸得太干，太干則樣品不易進入薄膜的網孔內，而造成電泳起始點參差不齊，影響分離效果。吸水量以不干不濕為宜。為防止指紋感染，取膜時，應戴指套或用鑷子。
2、緩沖液的選擇
醋酸纖維素薄膜電泳常選用 BBT電泳緩沖液（pH8.6），其濃度為0.05mol/L—0.09mol/L。選擇何種濃度與樣品及薄膜的薄厚有關。選擇時，先初步定下某一濃度，如電泳槽兩極之間的膜長度為8 cm—10cm，則需電壓25V/cm膜長，電流強度為0.4mA/cm—0.5mA/cm膜寬。當電泳達不到或超過這個值時，則應增加緩沖液濃度或進行稀釋。緩沖液濃度過低，則區帶泳動速度快，并由于擴散變寬；緩沖液濃度過高，則區帶泳動速度慢，區帶分布過于集中不易分辨。
3、加樣量
加樣品的多少與電泳條件、樣品的性質、染色方法與檢測手段靈敏度密切相關。作為一般原則，檢測方法越靈敏，加樣量則越少，對分離更有利。如加樣量過大，則電泳后區帶分離不清楚，甚至互相干擾，染色也較費時。如電泳后用洗脫法定量時，每厘米加樣線上需加樣品0.1μl—0.5μl約相當于5μg—1000μg蛋白。血清蛋白常規電泳分離時，每厘米加樣線加樣量不超過1μl，相當于60μg—80μg的蛋白質。但糖蛋白和脂蛋白電泳時，加樣量則應多些。對每種樣品加樣量均應先作預實驗加以選擇。
點樣好壞是獲得理想圖譜的重要環節之一，以印章法加樣時，動作應輕、穩，用力不能太重，以免將薄膜弄壞或印出凹陷而影響電泳區帶分離效果。
4、電量的選擇
電泳過程應選擇合適的電流強度，一般電流強度為0.4mA/cm—0.5mA/cm寬膜為宜。電流強度高，尤其在溫度較高的環境中，可引起蛋白質變性或由于熱效應引起緩沖液中水分蒸發，使緩沖液濃度增加，造成膜片干涸。電流過低，則樣品泳動速度慢且易擴散。
5、染色液的選擇
對醋酸纖維素薄膜電泳后染色應根據樣品的特點加以選擇。其原則是染料對被分離樣品有較強的著色力，背景易脫色；應盡量采用水溶性染料，不宜選擇醇溶性染料，以免引起醋酸纖維素膜溶解。
應控制染色時間。時間長，薄膜底色深不易脫去；時間短，著色淺不宜區分，或造成條帶染色不均，必要時可進行復染。
6、透明及保存
透明液應臨用前配制，以免冰乙酸及乙醇揮發影響透明效果。這些試劑最好選用分析純。透明前，薄膜應*干燥。透明時間應掌握好，如在透明乙液中浸泡時間太長則薄膜溶解，太短則透明度不佳。
透明后的薄膜*干燥后才浸入石蠟中，使薄膜軟化。如有水，則液體石蠟不易浸入，薄膜不易平展。宜。
電泳緩沖液（pH8.6）如何正確使用
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